详情
您现在的位置: 首页 / 科普教育

胎儿反复脑实质出血及囊性脑白质软化灶形成生后确诊为COL4A1基因突变1例

发布时间: 2022-12-07 09:41:20 浏览次数: 9980来源:中华围产医学杂志

本文引用格式:刘千祺, 朱颖, 侯新琳, 等. 胎儿反复脑实质出血及囊性脑白质软化灶形成生后确诊为COL4A1基因突变1例 [J] . 中华围产医学杂志, 2022, 25(10) : 793-796. DOI: 10.3760/cma.j.cn113903-20211215-01036.


刘千祺1  朱颖2  侯新琳3  孙伟杰1  陈俊雅1
1北京大学第一医院妇产科,北京 100034;2北京大学第一医院医学影像科,北京100034;3北京大学第一医院儿科,北京100034
通信作者:陈俊雅,Email:xindichen@sina.com,电话:010-83573011

 摘  要




本文报告了1例胎儿期反复出现多发脑实质出血合并囊性脑白质软化灶形成,生后脐血基因检测为COL4A1基因新发突变的胎儿。该胎儿胎龄25周时超声发现脑实质内及小脑半球多处新鲜出血灶,定期复查超声及神经系统MRI,可见反复多发脑实质出血伴出血后多发脑白质囊性软化灶形成。羊水染色体荧光原位杂交及染色体微阵列分析未见异常。该胎儿于胎龄37周+3剖宫产出生,生后1和5 min Apgar评分均为10分,但生后出现反复呼吸暂停。生后6 d神经系统MRI提示新发脑实质出血伴脑白质软化灶形成。生后90 d随访时,该患儿四肢肌张力仍偏低,此后失访。全外显子组测序提示患儿COL4A1基因c.4738G>A(NM_001845.4;p.G1580S)新发杂合突变,其父母均未携带。由本例认为,对颅内出血的胎儿进行产前诊断时,特别是对胎儿期反复出现脑实质出血伴有出血后脑白质软化形成者,应考虑COL4A1基因突变可能。明确此基因诊断有助于客观分析胎儿预后,指导分娩方式。
【关键词】  脑出血;白质软化病, 脑室周围;胶原型;突变;超声检查, 产前;胎儿
基金项目:首都卫生发展科研专项(2020-2-4074)

孕妇38岁,孕2产0,胎停育2次,均未行胚胎染色体检查。夫妻双方染色体正常。本次妊娠为自然受孕,自早孕期于北京大学第一医院规律产前检查(简称产检)。孕12周超声检查提示胎儿颈项透明层(nuchal translucency, NT)厚度为1.06 mm。因孕妇高龄,医师建议行羊膜腔穿刺检查,但孕妇拒绝。无创产前检测结果为低风险。孕22周超声提示胎儿胃壁高回声光斑,直径4.9 mm。孕25周超声提示胎儿脑实质内及小脑半球可探及多处新鲜出血灶(图1),最大径为17.2 mm,其内可探及不规则软化灶,直径5.1 mm,考虑胎儿颅内多发脑实质出血。血清TORCH检查[包括弓形虫(Toxoplasma gondii)、风疹病毒(Rubella virus)、巨细胞病毒(Cytomegalovirus)和单纯疱疹病毒(Herpes simplex virus)及其他病原微生物(Others)]未见异常。羊水染色体荧光原位杂交(fluorescence in situ hybridization, FISH)、染色体微阵列分析(chromosomal microarray analysis, CMA)及羊水巨细胞病毒等检查均未见异常。孕27周复查超声提示胎儿脑实质内、外侧裂周围、胼胝体周围及小脑半球可探及多处新鲜出血灶(图2A),最大者为34 mm×8 mm;右侧侧脑室前角旁紧邻侧脑室处可见多个软化灶(图2B),最大者8 mm×2 mm,考虑为多发脑实质出血伴出血后脑实质形成多发囊性软化灶。MRI可见右侧侧脑室前角旁软化灶(图3A),右侧额叶脑实质出血(图3B)。孕30周超声提示右侧侧脑室外脑实质内(图4A)、右侧额叶近皮质边缘处(图4B)均探及多发软化灶,考虑脑穿通畸形可能。孕31周MRI提示右侧侧脑室前角旁软化灶大致同前,右侧额叶可见新发条片状软化灶。孕32周,多学科会诊考虑胎儿反复多发脑实质出血,伴出血后脑实质损伤,远期预后不良,建议引产,但孕妇要求继续妊娠。孕34周超声提示右侧侧脑室前角外脑实质内可探及一软化灶(图5A),形态不规则,大小17 mm×11 mm×7 mm;右侧尾状核头部内可探及一软化灶,周围可见瘢痕形成(图5B)。孕37周超声提示颅内表现较前无明显变化,胎儿大脑中动脉阻力减低,估计胎儿体重2 214 g(第2.1百分位),考虑为胎儿生长受限,入院引产;因“引产失败”于孕37周+3行剖宫产术。新生儿出生体重2 200 g,1、5和10 min Apgar评分均为10分。患儿生后反复出现呼吸暂停等癫痫样表现,脑电图示脑电成熟轻度延迟(半球间同步性欠佳),稍多量多灶尖波、棘波发放。生后6日龄头颅MRI示右侧额叶新发脑实质出血灶(图6A),右侧侧脑室前角旁软化灶(图6B)。1和3月龄随访,患儿体格发育可见规律增长,四肢肌张力仍偏低。3月龄脑电图提示双侧后头部少量中-高波幅棘慢波(睡眠期),此后失访。生后脐血全外显子组测序(whole exome sequencing, WES)检测提示COL4A1基因c.4738G>A(NM_001845.4;p.G1580S)杂合突变(图7),从而导致氨基酸改变p.G1580S(甘氨酸>丝氨酸)。此突变为新发突变,根据美国医学遗传学和基因组学学会指南评级为致病性突变,其父母均未携带。
89a78b150874fae0cab728c4a800cfc3.jpg
7fd5f314221cec820dbb4a52e3b4a2c7.jpg
d96d9d966decc769baeb3aa608411df9.jpg
517e401aaa500be6bdc0990d9057f9db.jpg
b5115f4dcafc259fe6e08f10fdc81236.jpg

讨论 胎儿颅内出血是一种较为罕见的疾病,文献报道的发病率约为1/10 000,在转诊中心机构报告的发生率为(0.5~1)/1 000[1]。其中多数颅内出血为脑室内出血,脑实质内出血非常罕见,尤其是反复出血、新鲜出血与出血后的陈旧损伤同时存在的病例更加罕见。虽然胎儿不良预后是可预见的,但是明确出血原因、准确评价再次妊娠胎儿的再发风险对患儿家庭非常重要。本患儿出生后WES显示为COL4A1基因杂合突变。
COL4A1基因编码Ⅳ型胶原蛋白α1链,并与α2链一起形成Ⅳ型胶原的网状结构,主要表达于脑、肌肉、肾及眼[2]。Ⅳ型胶原蛋白是基底膜的重要组成部分,COL4A1基因突变将影响Ⅳ型胶原蛋白的正常结构,从而影响基底膜稳定性[3]。2005年,Gould等[3]首次在患有脑穿通畸形的人类和小鼠家系中可以检测到该基因突变,并且杂合突变即可致病,纯合突变的致死率较高,多在生后1 d内死亡。进一步进行小鼠模型研究,发现COL4A1基因突变可导致脑部多发微小血管病变,从而导致脑出血及脑白质病变,最终形成脑穿通畸形(在线人类孟德尔遗传数据库编号175780)。此外,Gould等[3-4]还发现COL4A1基因突变可以引起其他器官,如视网膜和肾等的微小血管病变。
此后,多项研究在反复脑实质出血的患者中检测到COL4A1基因突变,特别是对于脑实质出血发生早、出血病灶不对称、在短时间内反复发作的患者,要警惕COL4A1基因突变[5]。近年来随着基因检测技术的发展,罕见性遗传病的产前诊断率逐步提高。基因和基因表型的异质性高,为产前诊断带来困难,也使得全基因组测序技术在产前的应用受到局限。因此通过遗传学诊断来明确病因,完善罕见性遗传病的表型谱是十分重要的[6]。就COL4A1基因而言,国外仅有少数关于COL4A1基因突变患者胎儿期即出现临床表现的个例报道。2009年有学者在MRI检查发现陈旧性脑实质出血灶的新生儿中检测到COL4A1基因突变,从而推测这些患儿在宫内可能已经发生脑实质出血[7-8]。2012年国外首次报道了孕期发现反复胎儿脑实质出血,通过基因检测证实为COL4A1基因突变的病例[9],之后有少量国外文献报道了孕期发现胎儿COL4A1基因突变的病例[10-11]。本例为胎儿期出现反复脑出血伴出血后多发脑软化灶形成,最终确诊为COL4A1基因突变。患儿为c.4738G>A杂合突变,与2009年de Vries等[8]报道的遗传性脑穿通畸形的家系突变位点一致,但该文献并未描述该家系的胎儿期表型,因此本例进一步证实并且完善了该突变位点的胎儿表型谱。
导致胎儿颅内出血及出血后脑损伤的原因及危险因素很多[12-13]COL4A1基因突变在胎儿期报道的病例较少,在产前诊断方面往往会忽视其重要性,存在漏诊的可能。但这些患儿多数表现为一次性或陈旧性颅内出血。对于围产期发现脑白质软化的患儿,临床上常考虑产伤、窒息和呼吸衰竭、感染、心肺缺陷、低出生体重、脑血管发育不成熟等[14],即使进行遗传学检测,也往往侧重于EIF2BSCP2等基因,而忽略COL4A1基因。对于孕期发现胎儿反复脑实质出血者,应考虑遗传性疾病,特别是COL4A1基因突变的可能。2021年发表的一项回顾性研究发现,在18例孕期及出现严重的多发脑实质出血或多发脑出血-缺血病灶的胎儿中,有5例检测出明确的COL4A1基因致病性突变,有1例检测意义出尚不明确的COL4A1基因突变[15],由此可见在多发脑出血的胎儿中检测出COL4A1基因致病性突变的概率明显高于正常人群。COL4A1基因突变为单基因显性遗传病,常规染色体核型分析及巨细胞病毒检测等方法并不能检出此疾病。因此,对于胎儿期超声或神经系统MRI检查发现反复脑实质出血,特别是有不对称脑出血及多发脑出血-缺血病灶并且伴有出血后脑白质软化的胎儿,应考虑进行WES,明确是否存在COL4A1基因突变。此外,应该注意筛查胎儿是否存在其他微血管病变,如眼部视网膜病变(出血、扭转)等[4]。此外,Gould等[4]的研究模型还指出,COL4A1基因突变导致脑血管病变后,环境因素是导致最终发生脑实质出血的重要诱因,如产伤等。因此,对于COL4A1基因突变的胎儿可考虑行剖宫产终止妊娠,以减少分娩时创伤所导致的新发脑实质出血。产前明确此基因诊断有助于客观分析胎儿预后,指导分娩方式。

参考文献

[1] 李秀梅, 陈俊雅, 侯新琳, 等. 脑室出血胎儿的结局和预后[J].中华围产医学杂志,2021,24(1):3-10. DOI: 10.3760/cma.j.cn113903-20200807-00751.

Li XM, Chen JY, Hou XL, et al. Outcomes and prognosis of fetal intraventricular hemorrhage[J]. Chin J Perinat Med, 2021, 24(1): 3-10. DOI: 10.3760/cma.j.cn113903-20200807-00751.

[2] Nyberg P, Xie L, Sugimoto H, et al. Characterization of the anti-angiogenic properties of arresten, an alpha1beta1 integrin-dependent collagen-derived tumor suppressor[J]. Exp Cell Res, 2008,314(18):3292-3305. DOI: 10.1016/j.yexcr.2008. 08.011.

[3] Gould DB, Phalan FC, Breedveld GJ, et al. Mutations in Col4a1 cause perinatal cerebral hemorrhage and porencephaly[J]. Science, 2005,308(5725):1167-1171. DOI: 10.1126/science. 1109418.

[4] Gould DB, Phalan FC, van Mil SE, et al. Role of COL4A1 in small-vessel disease and hemorrhagic stroke[J]. N Engl J Med, 2006,354(14):1489-1496. DOI: 10.1056/NEJMoa053727.

[5] Vahedi K, Kubis N, Boukobza M, et al. COL4A1 mutation in a patient with sporadic, recurrent intracerebral hemorrhage[J]. Stroke, 2007,38(5):1461-1464. DOI: 10.1161/STROKEAHA. 106.475194.

[6] 潘虹.如何撰写一篇高质量的产前诊断单基因病相关病例报告[J]. 中华围产医学杂志,2022,25(1):21-24. DOI: 10.3760/cma.j.cn113903-20211206-01005.

Pan H. How to write a high-quality case report on the prenatal diagnosis of monogenic diseases[J]. Chin J Perinat Med, 2022,25(1):21-24.DOI: 10.3760/cma.j.cn113903-20211206-01005.

[7] Bilguvar K, DiLuna ML, Bizzarro MJ, et al. COL4A1 mutation in preterm intraventricular hemorrhage[J]. J Pediatr, 2009,155(5):743-745. DOI: 10.1016/j.jpeds.2009.04.014.

[8] de Vries LS, Koopman C, Groenendaal F, et al. COL4A1 mutation in two preterm siblings with antenatal onset of parenchymal hemorrhage[J]. Ann Neurol, 2009,65(1):12-18. DOI: 10.1002/ana.21525.

[9] Lichtenbelt KD, Pistorius LR, De Tollenaer SM, et al. Prenatal genetic confirmation of a COL4A1 mutation presenting with sonographic fetal intracranial hemorrhage[J]. Ultrasound Obstet Gynecol, 2012,39(6):726-727. DOI: 10.1002/uog.11070.

[10] de Vries LS, Mancini GM. Intracerebral hemorrhage and COL4A1 and COL4A2 mutations, from fetal life into adulthood[J]. Ann Neurol, 2012,71(4):439-441. DOI: 10.1002/ana.23544.

[11] Colin E, Sentilhes L, Sarfati A, et al. Fetal intracerebral hemorrhage and cataract: think COL4A1[J]. J Perinatol, 2014,34(1):75-77. DOI: 10.1038/jp.2013.135.

[12] Patel DR, Neelakantan M, Pandher K, et al. Cerebral palsy in children: a clinical overview[J]. Transl Pediatr, 2020,9(Suppl 1):S125-S135. DOI: 10.21037/tp.2020.01.01.

[13] Biswas A, Mankad K, Shroff M, et al. Neuroimaging perspectives of perinatal arterial ischemic stroke[J]. Pediatr Neurol, 2020,113:56-65. DOI: 10.1016/j.pediatrneurol.2020. 08.011.

[14] Rezaie P, Dean A. Periventricular leukomalacia, inflammation and white matter lesions within the developing nervous system[J]. Neuropathology, 2002,22(3):106-132. DOI: 10.1046/j.1440- 1789.2002.00438.x.

[15] Maurice P, Guilbaud L, Garel J, et al. Prevalence of COL4A1 and COL4A2 mutations in severe fetal multifocal hemorrhagic and/or ischemic cerebral lesions[J]. Ultrasound Obstet Gynecol, 2021,57(5):783-789. DOI: 10.1002/uog.22106.